透射电镜

服务介绍：

透射电镜（Transmission Electron Microscope，TEM），全称透射电子显微镜，是把经加速和聚集的电子束投射到超薄切片的样品上（通常70-90nm），电子与样品中的原子碰撞而改变方向，从而产生立体角散射。散射角的大小与样品的密度、厚度相关，因此可以形成明暗不同的影像，影像将在放大、聚焦后在成像器件上显示出来。是一种高分辨率（0.1nm-0.2nm）、高放大倍数（0.2K-600K）的显微镜。是观察和研究物质超微结构的强有力工具。

主要用途：

透射电镜在细胞生物学、组织学、病毒学、病理学、分子生物学、材料科学等诸多领域具有广泛应用。可以观测动物植物细胞超微结构，如线粒体、内质网、高尔基体、溶酶体、叶绿体、液泡、细胞内生细菌等结构及病理变化。可以观测病毒颗粒、外泌体、病原微生物、各类细菌真菌、纳米材料及纳米颗粒、晶体结构。

检验原理：

由电子枪发射出来的电子束，在真空通道中沿着镜体光轴穿越聚光镜，通过聚光镜将之汇聚成一束尖细、明亮而又均匀的光斑，照射在样品室内的样品上里透过样品后的电子束携带有样品内部的结构信息，样品内致密处透过的电子量少，稀疏处透过的电子量多；经过物镜的会聚调焦和初级放大后，电子束进入下级的中间透镜和第1、第2投影镜进行综合放大成像，最终被放大了的电子影像投射在观察室内的荧光屏上；荧光屏将电子影像转化为可见光影像以供使用者观察。

实验流程：

1、电镜制样。

2、镜下预览观察样本。

3、正式实验拍照。

样本要求及运输条件：

1、取材要求：

（1）动物麻醉后，快速取出需要检测的组织（研究的目的区域），将组织切成1*1*1mm左右小块，固定于2.5%戊二醛固定液4℃过夜固定。

（2）植物组织除麻醉外，其他操作相同。组织投入固定液后需要进行真空抽气让组织沉底，如无条件抽气可用滤纸将组织塞进固定液内，组织不能漂浮在固定液表面。

2、取材流程：

（1）组织：新鲜组织确定取材部位，尽量减小牵拉、挫伤与挤压等机械损伤，1-3分钟内取样，取样组织1mm3大小。取材前可提前准备装有电镜固定液的培养皿，将小组织块离体取下后立即投入培养皿内，用手术刀在培养皿的固定液中进行切割成1mm3的小组织块。再将切割好的小组织块转移至装有新的电镜固定液的EP管内继续固定，室温固定2小时，再转移至4℃保存。

（2）保持低温环境：为降低自溶酶活性，最好在4℃低温条件下取材，容器和器械预冷；将修整好的标本块放入戊二醛固定液后，普通4℃冰箱保存。

3、特殊组织取材：客户根据实验目的采取合理固定方式。脑组织，建议采取灌注固定方法，充分灌注固定后，按照取材流程留取目的区域，将目的区域固定于2.5%戊二醛固定液中，4℃冰箱保存。